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                細胞周期檢測(流式細胞術)

                發布時間: 2022-10-18  點擊次數: 2956次

                原理


                流式細胞周期檢測是一種常見的檢測細胞增殖情況的方法之一,細胞在不同周期時,其內的DNA含量不同。碘化丙啶(PI)作為一種核酸嵌入型染料,能夠進入固定后的細胞中,與細胞內的核酸結合,其熒光強度與DNA含量成正比。通過流式細胞儀檢測不同細胞中的熒光強度,從而判定不同組別中細胞周期發生的變化。


                用途


                檢測不同組別或處理對某種細胞周期的改變。


                材料與儀器


                【器材】
                流式細胞儀、移液器、槍頭、離心管、離心機、流式細胞儀、水浴鍋、流式管、濾頭;
                【試劑】0.25% 胰蛋白酶溶液、PBS、RNA酶、PI染液、70% 乙醇溶液(建議提前放入負二十預冷);


                步驟


                1.以腫瘤細胞為例,將正常生長的對照或處理組腫瘤細胞計數,每組取2×105-3×105個細胞鋪板,待細胞貼壁后,將正常培養基替換為無血清1640培養基,同步化20 h,使得所有細胞都進入相同的細胞周期時期;同步完后,將培養基重新替換為正常含血清培養基,繼續培養24 h;
                 
                2.用不含EDTA的胰酶將細胞消化,收集細胞,300 g,離心3 min;用吸引器去除培養基,用PBS清洗細胞一次,再次300 g,離心3 min;去除PBS,用提前預冷的70%酒精重懸細胞沉淀,4℃固定過夜;
                 
                3.4℃,1000 g,離心3-5 min,去除酒精,用PBS清洗3遍,最后一遍去除PBS;加入300 μL PBS,輕輕吹打,重懸細胞沉淀,加入相應量的Rnase至終濃度100 μg/mL,37 ℃水浴鍋中消化30 min;
                 
                4.上機前加入PI(5 mg/mL)至終濃度50 μg/mL,避光孵育15 min;孵育完后,過300目細胞篩,上機檢測;
                 
                5.分析數據。
                  


                注意事項


                1. PI為致癌物質,避免用手直接接觸。

                2. 細胞數目應該達到2x104個,細胞數目過少影響實驗結果的準確性。
                 
                3.鋪板的細胞數量以收獲細胞時有足夠的生長空間來動態調節,現在的流式細胞儀靈敏度很高,不需要太多的細胞。
                 
                4. 在制備時,要清洗干凈酒精,特別注意清洗過程中細胞的損失。離心次數不宜過多,防止細胞丟失。
                 
                5. 可以用未處理的細胞調試流式細胞儀。
                 
                6.胰酶不加EDTA

                 


                常見問題


                Q:酒精固定后細胞難以沉淀下來,導致細胞丟失較多;

                A:可適當延長離心時間和轉速。


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