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神經(jīng)膠質(zhì)細胞培養實(shí)驗

發(fā)布時(shí)間： 2023-01-05　　點(diǎn)擊次數： 889次

材料與儀器
大鼠
CMF-Hanks液胰蛋白酶 DMEM F12
水浴鍋培養箱
步驟
一、原代培養

1. 選用生后1周的新生大白鼠，用碘酒,酒精棉球消毒，斷頭取其大腦皮層組織。

2. 解剖顯微鏡下，剝離腦膜，切除大腦髓質(zhì)部分。

3. 將大腦皮質(zhì)在無(wú)Ca2+、Mg2+Hanks液(CMF-Hanks液)中剪碎。

4. 室溫下靜置10 min。

5. 在37℃水浴箱中用0.125%的胰蛋白酶(用CMF-Hanks液配制)消化30 min。

6. 加入少許含20%血清的DMEM/F12(DMEM與F12為1:1)混合培養液(下同)，用吸管稍加吹打至胰酶液與培養液混勻。離心5 min(1 000 r/min)。

7. 吸去上清含酶液，重新加入含血清培養液，用吸管反復吹打至組織塊消散為止。制成細胞懸液(暫稱(chēng)初細胞懸液)。

8. 將初細胞懸液接種到玻璃瓶(或培養皿)中，于37℃、5%CO2培養箱中孵育30 min。

9. 翻轉培養瓶,吸出瓶中的細胞懸液。用孔徑為75μm的不銹鋼網(wǎng)過(guò)濾。

10. 將濾過(guò)液離心10 min(1 000 r/min)，濃縮成約3ml的細胞懸液(暫稱(chēng)為次細胞懸液)。

11. 將次細胞懸液種植到預先涂布有多聚賴(lài)氨酸的培養瓶中。接種的細胞密度約1×104個(gè)/cm2。

12. 置CO2培養箱中培養3-5h,再補加足夠的培養液,繼續培養9-14 h。培養液顏色略微變黃時(shí)換液。

二、原代培養物的傳代

1. 吸取舊培養液用CMF-Hanks液洗滌2次。

2.加入少許0.125%的胰蛋白液消化15 min。以有血清培養液終止胰酶活性。

3.稍事手動(dòng)搖晃,倒掉含酶液。加入有血清培養液。

4.用吸管反復吹打使細胞從培養瓶壁脫落。收集細胞懸液,離心10 min(1 000 r/min)。棄上清液，給細胞沉淀物再加入培養液制成細胞懸液。

5.重復原代培養時(shí)8-10步。

6.將細胞懸液按0.5×105個(gè)/cm2的密度種植在經(jīng)鼠尾膠原包被的培養瓶中。

7.送入CO2培養箱中培養3-5 h，再加足夠的培養液,繼續培養。

三、結果

分離的大鼠大腦皮質(zhì)細胞在原代培養4 h后，部分細胞即可長(cháng)出細小胞突。培養3-4 d之后，細胞數量便明顯增大。大鼠大腦皮質(zhì)細胞原代培養一般在9-14 d，以星形膠質(zhì)細胞為主的細胞即可長(cháng)滿(mǎn)培養瓶壁。

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